THU NHẬN POLYPHENOL TỔNG TỪ VỎ HỒNG VỚI SỰ HỖ TRỢ CỦA DUNG MÔI EUTECTIC SÂU
DOI:
https://doi.org/10.62985/j.huit_ojs.vol26.no4.667Từ khóa:
Dung môi eutectic sâu, hoạt tính kháng oxy hóa, polyphenol, trích ly, vỏ hồng.Tóm tắt
Polyphenol trong vỏ hồng (Diospyros kaki L.) là nhóm hợp chất có giá trị sinh học, đặc biệt liên quan đến khả năng chống oxy hóa, nhưng nguồn nguyên liệu này vẫn chưa được khai thác hiệu quả. Nghiên cứu được thực hiện nhằm đánh giá khả năng sử dụng dung môi eutectic sâu (deep eutectic solvent, DES) để thu nhận polyphenol từ vỏ hồng, đồng thời xác định điều kiện chiết thích hợp và đánh giá hoạt tính chống oxy hóa của dịch chiết. Kết quả cho thấy hệ choline chloride/acid lactic (ChCl/LA) với 30% nước bổ sung, tỷ lệ nguyên liệu/dung môi 1/40 (w/v) và thời gian xử lý 120 phút ở 70 °C cho hiệu quả tốt nhất. Ở điều kiện này, hàm lượng polyphenol tổng đạt cao gấp 6,8 lần và hoạt tính bắt giữ gốc tự do DPPH cao gấp 1,6 lần so với khi sử dụng ethanol 70% trong cùng điều kiện chiết. Phân tích FTIR cho thấy quá trình xử lý bằng DES làm thay đổi một số đặc trưng cấu trúc của dịch chiết, thể hiện qua sự xuất hiện và thay đổi cường độ của các dải hấp thụ liên quan đến nhóm chức. Những kết quả thu được cho thấy ChCl/LA có khả năng nâng cao hiệu quả thu nhận các hợp chất polyphenol từ vỏ hồng và có thể được xem xét như một hệ dung môi theo hướng thân thiện hơn với môi trường trong quá trình khai thác hợp chất có hoạt tính sinh học từ phụ phẩm thực vật.
Tài liệu tham khảo
[1] S. Yaqub et al., “Chemistry and Functionality of Bioactive Compounds Present in Persimmon,” J. Chem., vol. 2016, pp. 1–13, 2016, https://doi.org/10.1155/2016/3424025
[2] A. P. George and S. Redpath, “Health and Medicinal Benefits of Persimmon Fruit: A Review,” Adv. Hortic. Sci., vol. 22, no. 4, pp. 244–249, 2008.
[3] M. D’Archivio, C. Filesi, R. Di Benedetto, R. Gargiulo, C. Giovannini, and R. Masella, “Polyphenols, dietary sources and bioavailability,” Ann. Ist. Super. Sanita, vol. 43, no. 4, pp. 348–61, 2007.
[4] B. M. Popovic et al., “Novel extraction of polyphenols from sour cherry pomace using natural deep eutectic solvents – Ultrafast microwave-assisted NADES preparation and extraction,” Food Chem., vol. 366, p. 130562, Jan. 2022, https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2021.130562
[5] N. Dabetić, V. Todorović, M. Panić, I. Radojčić Redovniković, and S. Šobajić, “Impact of Deep Eutectic Solvents on Extraction of Polyphenols from Grape Seeds and Skin,” Applied Sciences, vol. 10, no. 14, p. 4830, Jul. 2020, https://doi.org/10.3390/app10144830
[6] P. Denev and A. Yordanov, “Total polyphenol, proanthocyanidin and flavonoid content, carbohydrate composition and antioxidant activity of Persimmon (Diospyros kaki L.) fruit in relation to cultivar and maturity stage,” Bulgarian Journal of Agricultural Science, vol. 19, pp. 981–988, 2013.
[7] T. Payum, Das A. K., Shankar R., Tamuly C., and Hazarika M., “Antioxidant potential of Solanum spirale shoot and berry: a Medicinal food plant used in Arunachal Pradesh,” International Journal of Pharm Tech Research, vol. 5, no. 4, pp. 307–314, 2015.
[8] Y. Elouafy et al., “Bioactivity of walnut: Investigating the triterpenoid saponin extracts of Juglans regia kernels for antioxidant, anti-diabetic, and antimicrobial properties,” Progress in Microbes & Molecular Biology, vol. 6, no. 1, p. a0000325, 2023.
[9] N. Alsaud, K. Shahbaz, and M. Farid, “Application of deep eutectic solvents in the extraction of polyphenolic antioxidants from New Zealand Manuka leaves (Leptospermum Scoparium): Optimization and antioxidant activity,” J. Mol. Liq., vol. 337, p. 116385, Sep. 2021, https://doi.org/10.1016/j.molliq.2021.116385
[10] T. Negi et al., “Deep eutectic solvents: Preparation, properties, and food applications,” Heliyon, vol. 10, no. 7, p. e28784, Apr. 2024, https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e28784
[11] F. Mohd Fuad, M. Mohd Nadzir, and A. Harun@Kamaruddin, “Hydrophilic natural deep eutectic solvent : A review on physicochemical properties and extractability of bioactive compounds,” J. Mol. Liq., vol. 339, p. 116923, Oct. 2021, https://doi.org/10.1016/j.molliq.2021.116923
[12] M. Vilková, J. Płotka-Wasylka, and V. Andruch, “The role of water in deep eutectic solvent-base extraction,” J. Mol. Liq., vol. 304, p. 112747, Apr. 2020, https://doi.org/10.1016/j.molliq.2020.112747
[13] C. B. T. Pal and G. C. Jadeja, “Deep eutectic solvent‐based extraction of polyphenolic antioxidants from onion ( Allium cepa L.) peel,” J. Sci. Food Agric., vol. 99, no. 4, pp. 1969–1979, Mar. 2019, https://doi.org/10.1002/jsfa.9395
[14] B. Ozturk, C. Parkinson, and M. Gonzalez-Miquel, “Extraction of polyphenolic antioxidants from orange peel waste using deep eutectic solvents,” Sep. Purif. Technol., vol. 206, pp. 1–13, Nov. 2018, https://doi.org/10.1016/j.seppur.2018.05.052
[15] Wong B.Y., Tan C., and Chun Wai H., “Effect of solid-to-solvent ratio on phenolic content and antioxidant capacities of Dukung Anak (Phyllanthus niruri),” Int. Food Res. J., vol. 20, no. 1, pp. 325–330, 2013.
[16] E. Silva, H. Rogez, and Y. Larondelle, “Optimization of extraction of phenolics from Inga edulis leaves using response surface methodology,” Sep. Purif. Technol., vol. 55, no. 3, pp. 381–387, Jul. 2007, https://doi.org/10.1016/j.seppur.2007.01.008
[17] T. Juntachote, E. Berghofer, F. Bauer, and S. Siebenhandl, “The application of response surface methodology to the production of phenolic extracts of lemon grass, galangal, holy basil and rosemary,” Int. J. Food Sci. Technol., vol. 41, no. 2, pp. 121–133, Feb. 2006, https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2005.00987.x
